L международная выставка-презентация
научных, технических, учебно-методических и литературно-художественных изданий
Хирургическое лечение и методика забора интраокулярного содержимого при послеоперационном эндофтальмите
| Группа | Научная литература |
|---|---|
| Область науки | Медицинские науки |
| Название на русском языке | Хирургическое лечение и методика забора интраокулярного содержимого при послеоперационном эндофтальмите |
| Авторы на русском языке | Паштаев Н.П., Поздеева Н.А., Фролычев И.А., Колбовская Л.В., Михеева О.Ф. |
Резюме
Послеоперационный эндофтальмит – это тяжелое инфекционно-воспалительное осложнение, развивающееся, как правило, на 2-4 сутки после операции вследствие контаминации бактериями или грибами интраокулярно во время операции или в раннем послеоперационном периоде. Частота развития эндофтальмита составляет примерно 0,1-0,3% в зависимости от пред и послеоперационной профилактики и вида операции. При применении интракамерального введения антибактериальных препаратов в конце операции частота развития данного осложнения снижается до сотых долей процента. Основными возбудителями эндофтальмита во всем мире являются Грамм « + » бактерии, в частности с S. Epidermidis (до 77%), Грамм « – » бактерии составляют до 22%, грибы до 8%. Исключением являются азиатские страны, где процент Грамм « – » бактерий и грибов в структуре причин развития эндофтальмита выше, чем в Европе и Америке.
Стандартом лечения эндофтальмита является интравитреальное введение антибактериальных препаратов или витрэктомия с тщательным удалением экссудата и гиалоидной мембраны. При введении антибиотиков рационально применять комбинацию Ванкомицина 0,1мл (1мг.), который активен преимущественно в отношении Грамм « + » бактерий, с Цефтазидимом 0,1мл (2мг), который хорошо действует Грамм « – » бактерии. При грибковом эндофтальмите рационально использовать Амфоторицин В (0,01мг). Инъекцию раствора антибиотика следует проводить медленно, в течение 1-2 минут, в середину стекловидного тела, направляя конец иглы вверх, подальше от макулы. При формировании экссудата в полости стекловидного тела, необходимо выполнять витрэктомию с тампонадой витреальной полости перфторорганическим соединением или силиконовым маслом, или вводить раствор антибиотика в авитреальный глаз в конце операции. Дозировка антибактериального препарата, вводимого в авитреальный глаз остается дискутабельной темой.
Введение раствора антибиотика возможно с совместной тампонадой витреальной полости перфторорганическим соединением (ПФОС). При применении современных, очищенных ПФОС возможна тампонада витреальной полости до 14 суток, что подтверждается многочисленными экспериментальными и клиническими исследованиями. При тампонаде витреальной полости перфторорганическим соединением после получения результатов бактериологического исследования возможно дополнительное интравитреальное введение этиологически обоснованных антибактериальных препаратов. При тампонаде силиконовым маслом также можно вводить интравитреально раствор антибиотика, но высокий риск токсического действия из-за локального повышения концентрации антибактериального препарата в нижних отделах сетчатки (при тампонаде «легким» силиконом).
Для получения достаточного количества интраокулярного содержимого и исключения возможных ошибок при бактериологическом исследовании следует придерживаться определенного алгоритма действий, который включает в себя:
1. Забор материла из передней камеры (1мл) шприцом с иглой 30 G, с последующим восстановлением передней камеры физиологическим раствором,
2. Забор материала (1мл) из полости стекловидного тела витреотомом, аспирационная линия которого присоединена к шприцу (без включения инфузии),
3. Часть забранного материала (0,2 мл из передней камеры и 0,2 мл из полости стекловидного тела) наносят непосредственно на 2 тампона из вискозы и помещают в транспортную среду Эймса с углем для последующей транспортировки и бактериологического исследования в условиях лаборатории. Часть содержимого из передней камеры 0,2 мл и 0,2 мл из полости стекловидного тела помещают в 2 пробирки с транспортной средой с муколитиком для последующей ПЦР диагностики. Часть забранного материала – 0,2 мл содержимого из передней камеры и 0,2 мл из полости стекловидного тела – наносят на предметные стекла и проводят окраску по Грамму для бактериоскопии. Часть материала – по 0,2 мл – помещают на 2 чашки Петри с кровяным агаром в условиях лаборатории офтальмологической клиники и помещают в термостат при температуре 37°С на 24 часа, далее проводят транспортировку среды в термосумке в бактериологическую лабораторию для исследования первичной выращенной культуры. По 0,2 мл помещают на дно двух пробирок с тиогликолевой средой (высота среды 5 см) для контроля стерильности и создания анаэробных условий, культивирование проводят в условиях лаборатории офтальмологической клиники в термостате при температуре 37°С на 24 часа, с последующей транспортировкой в термосумке в бактериологическую лабораторию для исследования первичной выращенной культуры.
Далее через 24 ч культивирования первично выращенную культуру необходимо помещать в автоматический анализатор для идентификации микроорганизмов и определения чувствительности к антибиотикам. Данное исследование занимает 6-8 ч, поэтому при использовании данной методики есть возможность получить результат через 30-32 часа после окончания операции. Это позволяет дополнительно выполнить интравитреальное введение этиологически обоснованного антибактериального препарата.
При отсутствии роста первичной культуры необходимо проводить ПЦР диагностику забранного материала на наиболее распространенные возбудители послеоперационного эндофтальмита.
Правильное выполнение забора, транспортировки и лабораторной диагностики материала является неотъемлемой частью хирургического лечения послеоперационного эндофтальмита. Соблюдение определенного алгоритма позволяет в максимально быстрые сроки получить данные об этиологической причине заболевания, что можно использовать для своевременной корректировки антибактериальной терапии.
МЕДАЛЬ «ЗА ВЕРНОСТЬ ТРАДИЦИЯМ ОТЕЧЕСТВЕННОГО ОБРАЗОВАНИЯ» С УДОСТОВЕРЕНИЕМ